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최근 바이러스 중화항체 측정법 개발 현황
  • 작성일2015-05-14
  • 최종수정일2015-05-14
  • 담당부서호흡기바이러스과
  • 연락처043-719-7166
최근 바이러스 중화항체 측정법 개발 현황
Current Development of Virus Neutralizing Antibody Assays

질병관리본부 국립보건연구원 감염병센터 호흡기바이러스과
한영우, 강혜지, 김성순

Abstract

The virus-neutralizing antibodies play a critical role in granting protection against viral infection. These antibodies are also believed to be reliable surrogate markers of protective immunity. Currently, Plaque Reduction Neutralization Test (PRNT) is the most widely used method (also recommended by the World Health Organization) that measures neutralizing or enhancing antibodies. However, this traditional method is time-consuming and labor intensive, and not suitable for large-scale serological studies. There is still a need for simple, rapid assays which are suitable for high throughput assays. This paper described the current development of virus neutralization assay for detection of virus-neutralizing antibodies.


1. 들어가는 말


  바이러스가 인체에 감염된 후 체내에서는 바이러스에 대한 특이적 항체가 만들어지고 그 항체 속에는 바이러스 입자 표면과 결합하여 바이러스의 감염성을 중화하는 중화항체(neutralizing antibody)를 포함한다.
바이러스에 대한 중화항체의 측정은 백신의 효능평가, 감염병 유행 발생의 원인규명, 혈청학적 진단 및 역학조사에 있어서 매우 중요한 부분을 차지한다. 즉, 백신 접종 후의 중화항체가 조사를 통하여 바이러스에 대한 직접적인 방어항체가(protection antibody titer) 및 항체 양전율(seropositive conversion)을 확인함으로써 백신에 대한 효능을 평가하고 백신정책 수립에 근거자료로 사용할 수 있다. 또한 최근 유행 발생이 지속되고 있는 홍역, 유행성 이하선염 또는 기타 감염병 발생의 원인 규명에 대한 기초자료로 사용되어질 수 있으며, 효소면역측정법(Enzyme-Linked Immunosorbent Assay, ELISA)과 같은 혈청학적 방법과 병행함으로써 보다 명확하게 감염병 진단을 할 수 있다.

바이러스 중화항체(neutralizing antibody)의 측정법은 일정한 시간과 온도에서 바이러스와 혈청을 반응시킨 후 바이러스에 감수성(susceptibility)이 있는 세포에 감염시켜 중화(neutralization)되지 않은 바이러스를 탐색하여 중화항체의 유무를 알아보는 시험법이다. 바이러스 중화항체 측정은 고전적으로 플라크 감소 중화 항체 검사법(Plaque Reduction Neutralization Test, PRNT)이 이용되어져 왔다. PRNT법은 다양한 바이러스에 대한 방어력이 있는지 여부를 판단하는 가장 좋은 면역도 측정방법으로 알려져 있다. 하지만 PRNT법은 수행과정이 복잡하고, 노동력이 많이 드는(labor-intensive)등 여러 가지 단점을 수반하기 때문에 보다 간단하고, 민감도 높고, 표준화된 중화항체 측정법의 개발 및 개선에 대한 연구가 필요하다.

이러한 단점을 극복하고자 최근에는 바이러스 특이 항체를 이용한 ICA(Immuno-Colorimetric Assay) 기반의 FRNT(Focus Reduction Neutralization Test), 재조합 리포터 바이러스(recombinant reporter virus)를 이용한 PRMN(fluorescence based Plaque Reduction Microneutralization), 루시퍼라제(luciferase) 기반의 중화항체 시험법, 정량적 실시간 중합효소연쇄반응(quantitative Real Time Polymerase Chain Reaction, qRT-PCR) 기반의 qPCR-MN (pRT-PCR-micro neutralization assay), 고위험 바이러스를 대상으로 한 pseudotype 바이러스를 이용한 검사법 등 다양한 방법의 중화항체 측정법이 개발되어지고 있다[1-6].
이 글에서는 바이러스 중화항체 측정법 개발의 최근 현황을 중심으로 살펴보고, 이를 바탕으로 질병관리본부에서 수행중인 홍역 및 유행성이하선염 바이러스의 중화항체 측정법 개발에 적용하고자 한다.

Ⅱ. 몸 말

플라크 감소 중화 항체 측정법(Plaque Reduction Neutralization Test, PRNT)
  PRNT법은 단계 희석된 혈청과 바이러스를 일정시간 동안 반응 시킨 후, 세포에 감염시켜 일정기간 배양하면서 세포 병변 효과(cytopathic effect)를 통해 바이러스의 중화 항체능을 측정하는 방법이다. 이 방법은 홍역 바이러스(measles virus), 유행성이하선염 바이러스(mumps virus), 풍진 바이러스(rubella virus), 일본뇌염 바이러스(Japanese encephalitis virus), 뎅기 바이러스(dengue virus), 백시니아 바이러스(vaccinia virus) 등 다양한 바이러스에 대한 "Gold-standard" 중화항체 검사법으로 알려져 있다.

과거, 홍역의 경우 중화항체의 측정은 신속하고 간단히 수행할 수 있는 혈구응집억제검사법(hemagglutination inhibition assay) 또는 보체결합반응시험(complement fixation assay)법으로 수행하여 왔다. 1981년 Alberecht et al 그룹에서 2개월의 영유아에서 홍역 백신 실패 원인을 조사하기 위해 PRNT법을 개발했으며, 이에 의해 낮은 중화항체도 측정할 수 있도록 민감도 및 재현성이 크게 개선되었고, 세계보건기구의 홍역 국제 표준항체(WHO International standard Anti-measles antibody)를 사용함으로써 PRNT법을 통한 중화 항체능에 대한 표준화를 도입하였다[8]. 또한 ELISA (또는 EIA) 방법에 의한 총 IgG 항체가와 PRNT에 의한 중화항체가 비교시 PRNT를 통한 중화항체 검사법이 바이러스에 대한 방어력을 측정하는데 있어서 민감도가 더 높은 방법으로 평가되었다[9]

그러나, PRNT법은 바이러스에 대한 중화항체 측정시 좋은 방법이지만, 세포 병변을 나타내지 않는 바이러스의 경우 중화능을 측정하는데 있어서 제한적이며, 수행과정이 복잡하고 한 번에 수행할 수 있는 샘플의 개수가 제한적이고, 많은 양의 혈청 샘플이 소모되며, 세포에 바이러스를 감염시킨 후 플라크가 생성되기까지 5-10일 정도의 긴 배양 시간이 소요되는 단점을 가지고 있다.

ICA (Imuno-Colorimetric Assay) 기반의 바이러스 유래 단클론항체를 이용한 중화항체 측정법
  바이러스 유래 단클론 항체를 이용한 ICA 기반의 FRNT법은 바이러스에 감염된 세포에 바이러스 유래 단백질 단클론 항체를 부착시킨 후 HRP (horeradish peroxidase)로 표지된 2차 항체를 붙여 기질(substrate)로 발색시켜 바이러스에 감염된 세포를 확인하여 중화항체를 측정하는 방법으로 홍역, 유행성이하선염, 풍진 바이러스 등에 대한 중화항체 측정을 위하여 개발되었다[1]. FRNT의 장점은 바이러스가 세포에 감염시 세포병변효과를 보이지 않는 바이러스의 중화항체 측정에 적용할 수 있으며, PRNT법 대비 단시간(PRNT: 5-10일, FRNT: 2-3일) 내에 중화항체를 측정할 수 있고, 96 well cell culture plate를 사용할 수 있기 때문에 혈청 희석, 바이러스와의 중화반응, 바이러스 감염 시에 멀티채널 파이펫(multi-channel pipet)을 사용할 수 있어 수행과정이 쉬우며, 많은 샘플에서의 중화항체를 동시에 측정할 수 있다. 또한 PRNT법과 마찬가지로 민감도가 높고, 재현성이 뛰어나며, 자동화 이미지 분석 장치를 통하여 결과를 객관적이고 쉽게 분석할 수 있다.

재조합 리포터 바이러스를 이용한 중화항체 측정법
  재조합 리포터 바이러스는 SARS 바이러스(Severe Acute Respiratory Syndrome Virus), HCV(Human hepatitis C Virus), 인플루엔자 바이러스(Influenza Virus), HIV(Human Immunodeficiency Virus), 아데노바이러스(Adenovirus) 등 많은 바이러스에서 항바이러스 스크리닝(antiviral screening), 라이브 이미징(live imaging), 기능연구(functional studies) 등의 여러 분야에 적용되고 있다. 재조합 리포터 바이러스를 이용한 중화항체 측정법 PRMN은 매우 간단하고 신속하며 높은 민감도로 중화능을 측정할 수 있다. PRMN법은 형광을 발현 하는 재조합 바이러스를 제작하여 감염 바이러스로 이용하는 방법으로, 혈청과 재조합 바이러스를 중화반응 시킨 후 세포에 감염시켜 24-48시간 동안 배양 후 형광측정기(fluorescence EIA micro plate reader)를 통해 중화항체를 측정한다. GFP(Green Fluorescent Protein)를 발현하는 바이러스를 이용한 PRMN법은 홍역과 유행성이하선염 바이러스의 중화항체 측정에도 적용되고 있다[2].

최근에는 GFP의 단점인 스펙트럼 겹침(spectral overlap), 조직자가형광(tissue autofluorescence)을 보완하기 위하여 mCherry(red fluorescent protein)를 삽입한 재조합 바이러스를 이용한 중화항체 측정법이 인플루엔자 바이러스를 대상으로 개발된 바 있다[10].
특히, 재조합 루시퍼라제(luciferase) 리포터 바이러스 기반의 중화항체 측정법은 재조합 바이러스에 감염된 세포에 발현된 루시퍼라제 활성(luciferase activity)을 측정하여 바이러스를 검출하는 방법으로 루시퍼라제 리포터는 바이러스의 증식(replication)과 거의 동일하게 증가(replicates)하기 때문에 다른 측정법 보다 신속하고, 높은 민감도 및 재현성 있는 결과를 보여 준다. 최근에는 재조합 루시퍼라제 리포터 뎅기 바이러스를 사용한 중화항체 측정법이 보고된 바 있으며, 루시퍼라제 리포터 시스템은 다양한 바이러스의 중화항체 측정법에도 적용가능하기 때문에 향후에도 유용하게 사용될 것으로 예상된다[4].

정량적 실시간 중합효소연쇄반응(qRT-PCR) 기반의 중화항체 측정법
  다양한 중화항체 측정방법이 개발됨에도 불구하고 여전히 중화항체를 측정하는데 있어서 48시간 이상이 소모되고, 복잡한 수행단계로 인한 오류 및 경제적인 고비용 등이 단점으로 제시되고 있다. 이러한 문제점들을 해결하기 위하여 qRT-PCR 기반의 중화항체 측정법에 대한 연구가 진행되고 있다. 이 방법은 바이러스에 감염된 샘플에서 바이러스 RNA/DNA를 분리하여 qPCR로 바이러스의 양을 측정함으로써 신속하고 적은 비용으로 높은 민감도, 다량의 샘플 분석 및 자동화장비를 적용할 수 있는 중화항체 측정 방법이다. 최근 호흡기 세포융합 바이러스(human respiratory syncytial virus)의 중화항체 측정법에 적용되었으며, PRNT법과의 비교를 통해 그 유용성을 확인하였다[5].

Pseudotype 바이러스를 이용한 중화항체 측정법
  고위험 바이러스 또는 전염성이 강한 바이러스의 중화항체를 측정하기 위해서는 인체감염가능성이 있는 야생(wild type) 바이러스를 생물안전 3등급 연구시설(biosafety level-3)에서 사용해야 하는 등 제한점이 많다. 이를 보완하고자 고위험 바이러스를 변형시킨 pseudotype 바이러스를 이용한 중화항체 측정법 개발 연구가 진행되고 있다. 실제, HIV-1(Human Immunodeficiency Virus 1) 바이러스의 외피 단백질 gp140, SARS 바이러스의 S 당단백질, 일본뇌염 바이러스의 외막(envelope) 단백질 등을 지닌 MuLV(Moloney murine Leukemia Virus) pseudotype 바이러스를 이용하여 고위험 바이러스에 대한 중화항체 측정을 보다 안전하게 진행할 수 있게 되었다[6,11,12].

Ⅲ. 맺는말


  바이러스 중화항체 측정법은 대상 바이러스의 특성에 따라 다양한 방법으로의 개발 및 개선을 필요로 한다. 최근 중화항체 측정법 개발은 ICA 기반의 FRNT법, 재조합 리포터 바이러스를 이용한 중화항체 측정법, qRT-PCR 기반의 qPCR-MN, Pseudotype 바이러스를 이용한 중화항체 측정법 등 간단한 수행과정을 통해 다량의 샘플분석 여부, 결과의 재현성(reproducibility), 기존 측정법 보다 높은 민감도(sensitivity), 측정법의 표준화(standardization)등의 개선을 목표로 진행되고 있다.
질병관리본부 호흡기바이러스과에서는 PRNT법으로 홍역 바이러스에 대한 중화항체측정을 통해 진단 또는 면역도 조사 및 백신 효능 평가를 실시하고 있지만, 많은 노동력과 시간이 소모되고 수행과정이 복잡하여 다량의 샘플을 분석할 경우 제한점이 있다. 이러한 제한점의 개선을 통해 향후 국내 홍역 및 유행성이하선염 유행 발생 원인을 규명하기 위한 중화항체가 및 면역도 조사, MMR 백신의 효능평가에 대한 기반을 마련하고자 한다.

Ⅳ. 참고문헌

1. Vaidya SR, Kumbhar NS, Bhide VS. 2014. Detection of measles, mumps and rubella viruses by immuno-colorimetric assay and its application in focus reduction neutralization tests. Microbiol. Immunol. 58, 666–674.
2. Fujino M, Yoshida N, Kimura K, Zhou J, Motegi Y, Komase K, Nakayama T. 2007. Development of a new neutralization test for measles virus. J. Virol. Methods 142, 15–20.
3. Haralambieva IH, Ovsyannikova IG, Vierkant RA, Poland GA. 2008. Development of a novel efficient fluorescence-based plaque reduction microneutralization assay for measles virus immunity. Clin. Vaccine Immunol. 15, 1054–1059.
4. Song KY, Zhao H, Jiang ZY, Li XF, Deng YQ et al. 2014. A novel reporter system for neutralizing and enhancing antibody assay against dengue virus. BMC Microbiol. 14, 44.
5. Varada JC, Teferedegne B, Crim RL, Mdluli T, Audet S et al. 2013. A neutralization assay for respiratory syncytial virus using a quantitative PCR-based endpoint assessment. Virol. J. 10, 195.
6. Han DP, Kim HG, Kim YB, Poon LLM, Cho MW 2004. Development of a safe neutralization assay for SARS-CoV and characterization of S-glycoprotein. Virology 326, 140–149.
7. Cohen BJ, Audet S, Andrews N, Beeler J. 2007. Plaque reduction neutralization test for measles antibodies: Deion of a standardised laboratory method for use in immunogenicity studies of aerosol vaccination. Vaccine. 26, 59–66.
8. Albrecht P, Herrmann K, Burns GR. 1981. Role of virus strain in conventional and enhanced measles plaque neutralization test. J. Virol. Methods 3, 251–260.
9. Mauldin J, Carbone K, Hsu H, Yolken R, Rubin S. 2005. Mumps virus-specific antibody titers from pre-vaccine era sera: comparison of the plaque reduction neutralization assay and enzyme immunoassays. J. Clin. Microbiol. 43, 4847–4851.
10. Nogales A, Baker SF, Martínez-Sobrido L. 2015. Replication-competent influenza A viruses expressing a red fluorescent protein. Virology 476, 206–216.
11. Kim YB, Lee MK, Han, DP, Cho MW. 2001. Development of a safe and rapid neutralization assay using murine leukemia virus pseudotyped with HIV type 1 envelope glycoprotein lacking the cytoplasmic domain. AIDS Res. Hum. Retroviruses 17, 1715–1724.
12. Lee H, Min K, Park N, Bae GE, Nam JH et al. 2007. Development of Neutralization Assay using Murine Leukemia Virus (MuLV) Pseudotyped with Japanese encephalitis Virus (JEV) env Gene. J Bacteriol Virol. 37, 23–30.
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